产品货号:
WH0062
中文名称:
植物总RNA提取试剂盒
英文名称:
Total RNA Extraction Kit from Plant
产品规格:
50次
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本试剂盒采用高效、专一结合核酸的离心吸附柱和独特的缓冲系统,可从植物组织中快速提取总RNA,可同时处理大量不同样品。30-40分钟内即可完成反应,操作简单,提取迅速,溶液毒性小,实验安全。提取的总RNA纯度极高,没有蛋白和其他杂质的污染。
产品特点:
·针对植物材料独特配置,操作更简单、流程更优化。
·配有高效的DNase Ⅰ,可有效去除DNA污染。
·配有CS过滤柱,可有效去除其它杂质。
· RNA纯度更高,无杂质残留,特别适合于对纯度要求很高的下游实验。
·操作安全可靠,无需酚/氯仿抽提,无需氯化铯梯度离心,无需氯化锂或乙醇沉淀。
下游应用:
· RT-PCR
· Northern blot、Dot blot
· Real-time RT-PCR
·芯片分析
· polyA筛选、体外翻译、RNase保护分析和分子克隆
RNA得率:
试剂盒组成:
储存条件:室温(15-25℃)保存。RNase-Free DNase I,缓冲液RDD和RNase-Free ddH2O(管装)置于2-8℃保存;加入β-巯基乙醇的裂解液RL 4℃可放置一个月。
预防RNase污染,应注意以下几方面:
1.经常更换新手套。因为皮肤经常带有细菌,可能导致RNase污染。
2.使用无RNase的塑料制品和枪头避免交叉污染。
3.RNA在裂解液RL中时不会被RNase降解。但提取后继续处理过程中应使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4h,塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10min,然后用水彻底清洗,再灭菌,即可去除RNase。
4.配制溶液应使用无RNase的水。(将水加入到干净的玻璃瓶中,加入DEPC至终浓度0.1%(V/V),放置过夜,高压灭菌。)
使用前注意事项:
1.操作前在RL中加入β-巯基乙醇至终浓度1%,如1ml RL中加入10μl β-巯基乙醇。此裂解液最好现用现配。配好的RL 4℃可放置一个月,裂解液RL在储存时可能会形成沉淀,如果有沉淀出现,请加热溶解后使用。
2.植物组织裂解是否充分直接影响到RNA提取的质量和产量,本试剂盒中提供的裂解液RL,主要成分为异硫氰酸胍,适用于大多数植物组织的裂解,但有些植物组织(例如玉米的乳白色胚乳)或丝状真菌,由于次级代谢产物较特殊,异硫氰酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳的现象,购买试剂盒时可联系我司业务员更换另一种裂解液HL,将解决该问题。
3.第一次使用前应在漂洗液RW中加入无水乙醇,加入量请参见瓶上标签。
4.以下操作如非指明,均在室温下进行。
DNase I储存液的配制:
将DNase I干粉(1500U)溶解在550 μl RNase-Free ddH2O中,轻柔混匀,分装后-20℃贮存(可保存9个月)。
注意:从-20℃融化后的DNase I储存液保存于4℃(可保存6周),不要再次冻存。
操作步骤:
1.匀浆处理:
50-100mg植物叶片在液氮中迅速研磨成粉末,加入450 μl RL(使用前请先检查是否已加入β-巯基乙醇),涡旋剧烈震荡混匀。
注意1:在56℃孵育1-3 min将有助于植物组织裂解,但是对于某些富含淀粉的样品,请不要加热处理,防止因淀粉引起的样品膨胀现象。
注意2:由于植物多样性非常丰富,而且同种植物的不同生长发育阶段和不同组织的RNA含量都不相同,请根据具体实验情况选择合适的植物材料的用量。
2.将所有溶液转移至过滤柱CS上(过滤柱CS放在收集管中),12000rpm(~13400×g)离心2-5 min,小心吸取收集管中的上清至RNase-Free的离心管中,吸头尽量避免接触收集管中的细胞碎片沉淀。
注意:由于裂解液较粘稠,所以将溶液转移至过滤柱时,可以剪去部分吸头末端。
3.缓慢加入0.5倍上清体积的无水乙醇(通常为225 μl),混匀(此时可能会出现沉淀),将得到的溶液和沉淀一起转入吸附柱CR3中,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
注意:如果上清液体积有损失,请相应调整乙醇的加量。
4.向吸附柱CR3中加入350 μl去蛋白液RW1,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
5.DNase I工作液的配制:取10μl DNase I储存液放入新的RNase-Free离心管中,加入70 μl RDD溶液,轻柔混匀。
6.向吸附柱CR3中央加入80 μl的DNase I工作液,室温放置15 min。
7.向吸附柱CR3中加入350 μl去蛋白液RW1,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
8.向吸附柱CR3中加入500 μl漂洗液RW (使用前请先检查是否已加入乙醇),室温静置2 min,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
9.重复步骤8。
10.12000rpm(~13400×g)离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CR3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意:此步骤目的是将吸附柱CR3中残余的漂洗液去除,漂洗液的残留,可能会影响后续的RT等实验。
11.将吸附柱CR3放入一个新的RNase-Free离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加30-100 μl RNase-Free ddH2O,室温放置2 min,12000rpm(~13400×g)离心2 min,得到RNA溶液。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于30 μl,体积过小影响回收效率。RNA样品请在-70℃中保存。
RNA纯度及浓度检测:
完整性:RNA可用普通琼脂糖凝胶电泳(电泳条件:胶浓度1.2%;0.5×TBE电泳缓冲液;150V,15 min)检测完整性。由于细胞中70%-80%的RNA为rRNA,电泳后UV下应能看到非常明显的rRNA条带。28S rRNA的量约为18S rRNA的两倍,说明RNA的完整性较好。
纯度:OD260/OD280比值是衡量蛋白质污染程度的指标。高质量的RNA,OD260/OD280读数在1.8-2.1之间,比值为2.0是高质量RNA的标志。OD260/OD280读数受测定所用溶液的pH值影响。同一个RNA样品,假定在10mM Tris,pH7.5溶液中测出的OD260/OD280读数1.8-2.1之间,在水溶液中所测读数则可能在1.5-1.9之间,但这并不表示RNA不纯。
浓度:取一定量的RNA提取物,用RNase-Free ddH2O稀释n倍,用RNase-Free ddH2O将分光光度计调零,取稀释液进行OD260,OD280测定,按照以下公式进行RNA浓度的计算:
终浓度(ng/μl)= (OD260)×(稀释倍数n)×40
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产品特点:
·针对植物材料独特配置,操作更简单、流程更优化。
·配有高效的DNase Ⅰ,可有效去除DNA污染。
·配有CS过滤柱,可有效去除其它杂质。
· RNA纯度更高,无杂质残留,特别适合于对纯度要求很高的下游实验。
·操作安全可靠,无需酚/氯仿抽提,无需氯化铯梯度离心,无需氯化锂或乙醇沉淀。
下游应用:
· RT-PCR
· Northern blot、Dot blot
· Real-time RT-PCR
·芯片分析
· polyA筛选、体外翻译、RNase保护分析和分子克隆
RNA得率:
植物叶片(100mg) | 总RNA量(μg) |
拟南芥 | ~35 |
玉米 | ~25 |
西红柿 | ~65 |
烟草 | ~60 |
试剂盒组成:
组分 | 50T |
裂解液RL | 30ml |
去蛋白液RW | 140ml |
漂洗液RW | 12ml |
RNase-Free ddH2O(瓶装) | 15ml |
RNase-Free吸附柱CR3(含2ml收集管) | 50套 |
RNase-Free过滤柱CS(含2ml收集管) | 50套 |
DNase I | 1500U |
缓冲液RDD | 4ml |
RNase-Free ddH2O(管装) | 1ml |
RNase-Free离心管(1.5ml) | 50个 |
储存条件:室温(15-25℃)保存。RNase-Free DNase I,缓冲液RDD和RNase-Free ddH2O(管装)置于2-8℃保存;加入β-巯基乙醇的裂解液RL 4℃可放置一个月。
预防RNase污染,应注意以下几方面:
1.经常更换新手套。因为皮肤经常带有细菌,可能导致RNase污染。
2.使用无RNase的塑料制品和枪头避免交叉污染。
3.RNA在裂解液RL中时不会被RNase降解。但提取后继续处理过程中应使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4h,塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10min,然后用水彻底清洗,再灭菌,即可去除RNase。
4.配制溶液应使用无RNase的水。(将水加入到干净的玻璃瓶中,加入DEPC至终浓度0.1%(V/V),放置过夜,高压灭菌。)
使用前注意事项:
1.操作前在RL中加入β-巯基乙醇至终浓度1%,如1ml RL中加入10μl β-巯基乙醇。此裂解液最好现用现配。配好的RL 4℃可放置一个月,裂解液RL在储存时可能会形成沉淀,如果有沉淀出现,请加热溶解后使用。
2.植物组织裂解是否充分直接影响到RNA提取的质量和产量,本试剂盒中提供的裂解液RL,主要成分为异硫氰酸胍,适用于大多数植物组织的裂解,但有些植物组织(例如玉米的乳白色胚乳)或丝状真菌,由于次级代谢产物较特殊,异硫氰酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳的现象,购买试剂盒时可联系我司业务员更换另一种裂解液HL,将解决该问题。
3.第一次使用前应在漂洗液RW中加入无水乙醇,加入量请参见瓶上标签。
4.以下操作如非指明,均在室温下进行。
DNase I储存液的配制:
将DNase I干粉(1500U)溶解在550 μl RNase-Free ddH2O中,轻柔混匀,分装后-20℃贮存(可保存9个月)。
注意:从-20℃融化后的DNase I储存液保存于4℃(可保存6周),不要再次冻存。
操作步骤:
1.匀浆处理:
50-100mg植物叶片在液氮中迅速研磨成粉末,加入450 μl RL(使用前请先检查是否已加入β-巯基乙醇),涡旋剧烈震荡混匀。
注意1:在56℃孵育1-3 min将有助于植物组织裂解,但是对于某些富含淀粉的样品,请不要加热处理,防止因淀粉引起的样品膨胀现象。
注意2:由于植物多样性非常丰富,而且同种植物的不同生长发育阶段和不同组织的RNA含量都不相同,请根据具体实验情况选择合适的植物材料的用量。
2.将所有溶液转移至过滤柱CS上(过滤柱CS放在收集管中),12000rpm(~13400×g)离心2-5 min,小心吸取收集管中的上清至RNase-Free的离心管中,吸头尽量避免接触收集管中的细胞碎片沉淀。
注意:由于裂解液较粘稠,所以将溶液转移至过滤柱时,可以剪去部分吸头末端。
3.缓慢加入0.5倍上清体积的无水乙醇(通常为225 μl),混匀(此时可能会出现沉淀),将得到的溶液和沉淀一起转入吸附柱CR3中,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
注意:如果上清液体积有损失,请相应调整乙醇的加量。
4.向吸附柱CR3中加入350 μl去蛋白液RW1,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
5.DNase I工作液的配制:取10μl DNase I储存液放入新的RNase-Free离心管中,加入70 μl RDD溶液,轻柔混匀。
6.向吸附柱CR3中央加入80 μl的DNase I工作液,室温放置15 min。
7.向吸附柱CR3中加入350 μl去蛋白液RW1,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
8.向吸附柱CR3中加入500 μl漂洗液RW (使用前请先检查是否已加入乙醇),室温静置2 min,12000rpm(~13400×g)离心30-60 sec,倒掉收集管中的废液,将吸附柱CR3放回收集管中。
9.重复步骤8。
10.12000rpm(~13400×g)离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CR3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意:此步骤目的是将吸附柱CR3中残余的漂洗液去除,漂洗液的残留,可能会影响后续的RT等实验。
11.将吸附柱CR3放入一个新的RNase-Free离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加30-100 μl RNase-Free ddH2O,室温放置2 min,12000rpm(~13400×g)离心2 min,得到RNA溶液。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于30 μl,体积过小影响回收效率。RNA样品请在-70℃中保存。
RNA纯度及浓度检测:
完整性:RNA可用普通琼脂糖凝胶电泳(电泳条件:胶浓度1.2%;0.5×TBE电泳缓冲液;150V,15 min)检测完整性。由于细胞中70%-80%的RNA为rRNA,电泳后UV下应能看到非常明显的rRNA条带。28S rRNA的量约为18S rRNA的两倍,说明RNA的完整性较好。
纯度:OD260/OD280比值是衡量蛋白质污染程度的指标。高质量的RNA,OD260/OD280读数在1.8-2.1之间,比值为2.0是高质量RNA的标志。OD260/OD280读数受测定所用溶液的pH值影响。同一个RNA样品,假定在10mM Tris,pH7.5溶液中测出的OD260/OD280读数1.8-2.1之间,在水溶液中所测读数则可能在1.5-1.9之间,但这并不表示RNA不纯。
浓度:取一定量的RNA提取物,用RNase-Free ddH2O稀释n倍,用RNase-Free ddH2O将分光光度计调零,取稀释液进行OD260,OD280测定,按照以下公式进行RNA浓度的计算:
终浓度(ng/μl)= (OD260)×(稀释倍数n)×40
相关搜索:植物总RNA提取试剂盒,Total RNA Extraction Kit from Plant